1.一种高效提取植物基因组DNA的无毒提取液组合GPR.1，其组成如下：溶液GPR.1A：2～3.5% PEG8000，0.5M NaCl，0.1 M Tris‑HCl，0.05 M EDTA， 2～4%PVPP临用前加入，余量为双蒸水；其中2～4% PVPP是质量体积比；

溶液GPR.1D：18～20%PEG8000，3.3～3.6 M NaCl，余量为双蒸水；

溶液GNR.1E：50 mM Tris‑HCl，10 mM EDTA，2.5 M NaCl，余量为双蒸水；

还包括：

20mg/mL蛋白酶K，使用时单独加入；

20% SDS，使用时单独加入；

5 M乙酸钾溶液，使用时单独加入。

2.如权利要求1所述的一种高效提取植物基因组DNA的无毒提取液组合GPR.1，其特征在于，所述Tris‑HCl是pH 8.0的Tris‑HCl溶液。

3.如权利要求1所述的一种高效提取植物基因组DNA的无毒提取液组合GPR.1，其特征在于，所述EDTA是pH 8.0的EDTA溶液。

4.权利要求1或2或3所述的无毒提取液组合GPR.1应用于提取植物基因组DNA的用途。

5.一种基于权利要求1或2或3所述的无毒提取液组合GPR.1提取植物基因组DNA的方法，其特征在于：利用GPR.1A与蛋白酶K结合的SDS抽提缓冲液在65 ℃下裂解植物细胞，使染色体离析，蛋白质变性，释放出核酸；加入乙酸钾去除大部分蛋白质和多糖的沉淀后，采用GPR.1D和乙醇/GNR.1E连续两次沉淀DNA，去除多糖类、多酚类杂质，得到大量高纯度的DNA。

6.如权利要求5所述的提取植物基因组DNA的方法，其特征在于，在第二次沉淀DNA之前加入少量RNase A，去除RNA影响。

7.如权利要求6所述的提取植物基因组DNA的方法，其特征在于，包括以下步骤：（1）取植物叶片，于液氮中研磨成细粉，迅速转入2 mL离心管中，按每150mg±50mg植物叶片加入1000 μL溶液GPR.1A，剧烈摇匀；再加入65μL 20%SDS与5～6 μL 20mg/mL蛋白酶K贮液，轻缓颠倒摇匀；65℃保温30 min，不时轻缓颠倒摇匀；

（2）加入离心管三分之一体积的5 M乙酸钾溶液，65℃保温1 min，立即轻缓颠倒摇匀；4℃或冰上静置20 min； 4℃，20000×g，离心20 min，完成后置冰上；

（3）取上清液约1000 μL，转入装有二分之一体积的溶液GPR.1D的1.5 mL离心管中，轻缓颠倒摇晃30次以上直至混匀，4℃静置25 min；4℃，4000～5000×g，离心15 min，弃上清；

短暂离心，用吸头轻缓吸尽残留液体；

（4）加入0.1×TE，pH 8.0200 μL和10 mg/mL RNase A贮液2 μL，轻缓摇晃至沉淀完全消失，65℃保温15 min；加入300 μL的溶液GPR.1E，混匀；4℃，20000×g，离心10 min，完成后置冰上；

（5）取上清液450 μL，转入装有1000 μL ‑20℃预冷的无水乙醇的1.5 mL离心管中，仔细混匀，4℃静置20 min；4℃，13000～14000 g，离心10 min，弃上清；

（6）加入70%乙醇1000 μL，轻缓颠倒摇匀几次，4℃，13000～14000 g，离心5 min，弃上清；短暂离心，吸尽残留液体；加入30 μL的0.1×TE，pH 8.0溶液，轻弹至DNA沉淀完全消失，

65℃保温15 min，‑20℃贮存备用。