1.一种麻疯树无菌苗各组织诱导愈伤的方法，其特征在于，包括如下具体步骤：

S1.选取麻疯树种子，去除种皮后对种仁进行消毒；

S2.配制MS培养基，并于121℃灭菌15～20min，取出放置于无菌操作室冷却，待培养基凝固后使用；

S3.在消毒后种仁的子叶顶端位置切口，露出子叶顶端，将处理后的种仁插入播种在步骤S2的MS培养基上培养，使切口端不接触培养基，培养20d后得到麻疯树无菌苗的子叶；培养30d后得到无菌苗的真叶、带真叶的叶柄、茎段、子叶、带子叶的叶柄、子叶叶柄、带叶柄下胚轴和下胚轴；

S4.切取步骤S3培养的麻疯树无菌苗的子叶，将子叶的叶片切为块状，将块状子叶混合后，接种于愈伤组织诱导培养基中，各处理10瓶重复，每瓶2～5片子叶，在温度22～28℃，光照12h/d，光照强度2000～2500lx条件下愈伤诱导5～20d，观察麻疯树子叶愈伤组织的诱导情况；

S5.切取步骤S3培养的麻疯树无菌苗的真叶、带真叶的叶柄、茎段、子叶、带子叶的叶柄、子叶叶柄、带叶柄下胚轴和下胚轴，分别接种于愈伤组织诱导培养基中培养；各处理10瓶重复，每瓶3～7片组织，在温度22～28℃，光照12h/d，光照强度2000～2500lx条件下愈伤诱导15d后，观察上述8种麻疯树组织的愈伤诱导情况。

2.根据权利要求1所述麻疯树无菌苗各组织的诱导愈伤的方法，其特征在于，步骤S1中所述消毒的方法为：用75％的乙醇消毒40～50s后，用无菌水冲洗50～70s，再用消毒试剂消毒8～15min，无菌水冲洗5次，每次50～70s；所述消毒试剂为1～2％的辛吉尔灭或2～5％的NaClO。

3.根据权利要求1所述麻疯树无菌苗各组织的诱导愈伤的方法，其特征在于，步骤S2中所述MS培养基的成分为MS营养物，蔗糖和琼脂粉。

4.根据权利要求3所述麻疯树无菌苗各组织的诱导愈伤的方法，其特征在于，所述MS营养物：蔗糖：琼脂粉的质量比为(4.4～4.5)：(25～30)：(6～8)。

5.根据权利要求1所述麻疯树无菌苗各组织诱导愈伤的方法，其特征在于，步骤S3中所述切口的长度为2～3mm；所述的插入播种的方式为水平横放或垂直插入。

6.根据权利要求1所述麻疯树无菌苗各组织的诱导愈伤的方法，其特征在于，步骤S4中所述块状的尺寸为宽3～5mm，长0.5～1.5cm。

7.根据权利要求1所述麻疯树无菌苗组织的诱导愈伤的方法，其特征在于，步骤S4中所述的愈伤组织诱导培养基的成分为步骤S2所述MS培养基、2,4-二氯苯氧乙酸、6-苄氨基腺嘌呤、1-萘乙酸和水解酪蛋白。

8.根据权利要求7所述麻疯树无菌苗各组织诱导愈伤的方法，其特征在于，所述2,4-二氯苯氧乙酸、6-苄氨基腺嘌呤、1-萘乙酸和水解酪蛋白的质量比为(0.25～1.5)：(0.1～

0.75)：(0.5～1.25)：(50～400)，所述2,4-二氯苯氧乙酸、6-苄氨基腺嘌呤、1-萘乙酸和水解酪蛋白的总质量与MS培养基的质量体积比为(50.85～403.5)：1mg/L。

9.根据权利要求8所述麻疯树无菌苗各组织诱导愈伤的方法，其特征在于，所述2,4-二氯苯氧乙酸、6-苄氨基腺嘌呤、1-萘乙酸和水解酪蛋白的质量比为0.3：0.1：0.15：80，所述

2,4-二氯苯氧乙酸、6-苄氨基腺嘌呤、1-萘乙酸和水解酪蛋白的总质量与MS培养基的质量体积比为402.75：1mg/L。

10.根据权利要求1所述麻疯树无菌苗组织的诱导愈伤的方法，其特征在于，步骤S5中所述麻疯树无菌苗的真叶、茎段、子叶、子叶叶柄和下胚轴均水平横放于愈伤组织诱导培养基上，所述带真叶的叶柄、带子叶的叶柄和带叶柄下胚轴均垂直插入愈伤组织诱导培养基中。